1.包装清单:
产品编号 | 产品名称 | 规格(10 mL) | 规格(50 mL) |
BHC0740-1 | 1%阿尔新蓝染液(pH2.5) | 50 mL | |
BHC0740-2 | 3%醋酸水溶液 | 30 mL | 120 mL |
BHC0740-3 | 高碘酸氧化液 | 10 mL | 50 mL |
BHC0740-4 | Schiff试剂 | 10 mL | 50 mL |
BHC0740-5 | 重亚硫酸盐溶液 | 30 mL | 120 mL |
BHC0740-6 | 苏木素染液 | 10 mL | 50 mL |
2.保存条件:2-8℃保存,6个月内有效。
3. 产品简介:
PAS染色法(Periodic Acid-Schiff stain)在组织学上,主要用来检测组织中的糖类。过碘酸把糖类相邻两个碳上的羟基氧化成醛基,再用Schiff试剂和醛基反应使呈现紫红色。
糖原及其它PAS反应阳性物质均呈红色,细胞核呈蓝色。
4.使用说明:
1) 标本处理:固定过的冰冻切片或者细胞片直接用水洗两到三次;石蜡切片常规脱蜡至水(参考流程: 二甲苯(I)5 min→二甲苯(Ⅱ)5 min→100%乙醇2 min→95%的乙醇1 min→80%乙醇1 min→75%乙醇1 min→蒸馏水洗2 min)。
2) 3%醋酸水溶液处理1 min
3) 1%阿利新蓝染液染10~30 min。
4) 3%醋酸水溶液处理1 min,蒸馏水洗
5) 用高碘酸氧化液氧化5~10 min。
6) 流水充分水洗,蒸馏水洗涤2次。
7) Schiff试剂染5~20 min(此步为避光反正,最好在通风处,用完试剂请马上盖严)。
8) 吸干或者甩去Schiff试剂(如果不用重亚硫酸盐溶液洗,此步可直入水冲洗)。
9) 用重亚硫酸盐溶液清洗,用完盖严(一般此步可省,直接用蒸馏水洗)。
10) 水洗。
11) 苏木素染液浅染胞核2~3 min(可选)。
12) 水洗。
13) 脱水,透明,中性树胶封片。(参考流程:95%乙醇(I)1 min→95%乙醇(Ⅱ)1 min→100%乙醇(I)1 min→100%乙醇(Ⅱ)1 min→二甲苯石碳酸(3:1)1 min→二甲苯(I)1 min→二甲苯(Ⅱ)1 min→中性树胶封固)
14) 染色结果,镜下观察: 酸性黏液物质呈蓝色,中性黏液物质呈红色,混合黏液物质呈紫红色,细胞核呈浅蓝色。
5.注意事项:
1) 切片脱蜡应尽量干净,否则影响染色效果。
2) 过碘酸氧化时间不宜过久,氧化时的温度以18~22 ℃最佳。
3) 阿利新蓝染色液、过碘酸溶液、Schiff Reagent均应置于4℃密闭保存。
4) 酸性分化液应经常更换新液,分化时间应该依据切片厚薄、组织类别和酸性分化液的新旧而定。
5) 切片在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要,该依据切片厚薄、组织类别等决定。
6) 用苏木素染色液复染细胞核时应淡染,以免影响阳性物质AB的观察。目的是防止胞浆或黏蛋白着色而掩盖阿利新蓝的颜色。
*本试剂仅供实验室研究使用

027-87877773




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